Tabla nº 2: Resultados de la evaluación. 

En el análisis de protozoarios el mejor diagnosticado fue Giardia lambia, y las mayores dificultades en la Entoameba histolytica para un 83.3%, y la Endolimax nana el 50.0%, en los centros no adiestrados. De un 36.35 para la Histolytica y 9.0% para la Giardia en los adiestrados. Entre los helmintos la mayor aprobación fue en Trichuris trichuras, y Áscaris lumbricoides, los errores diagnósticos predominaron en Fasciola hepática y Taenia sp. (Tabla 3 y 4)

Tabla nº 3: Fallas en el diagnóstico de helmintos según el adiestramiento. Provincia de Cienfuegos. 

Tabla nº 4: Fallas en la identificación de protozoos según el adiestramiento. Provincia de Cienfuegos. 

CONCLUSIONES

La mayoría de los laboratorios aprobaron, (70.0%).Existen centros (policlínicos) con calificaciones deficientes.

Los municipios con resultados más desfavorables fueron Abreus y Cruces, y 2 policlínicos del municipio cabecera.

En el análisis de protozoarios el mejor diagnosticado fue Giardia lambia, y las mayores dificultades en la Entoameba histolytica para un 83.3%, y la Endolimax nana el 50.0%, en los centros no adiestrados.

De un 36.35 para la Histolytica y 9.0% para la Giardia en los adiestrados.

Entre los helmintos la mayor aprobación fue en Trichuris trichuras, y Áscaris lumbricoides, los errores diagnósticos predominaron en Fasciola hepática y Taenia sp.

BIBLIOGRAFÍA

1- ANAYA – VELÁZQUEZ, F. & SABANERO - LOPEZ, G., 1989 Use of Wright s stain to identify Entamoeba Histolyica trophozoites in faeces. Transaction of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene, 83:210.
2- ASH, L. R. & ORIHEL, T.C.,1987. Parasites: A Guide to laboratory Procedures and identification. Chicago: ASCP Press.
3- KOURI, P.; BASNUEVO, J. G. & SOTOLONGO, F., 1982 Helmintología Humana. Ciudad Habana: Editorial Pueblo y Educación.
4- NUÑEZ, F. A.; SANJURJO, E.; BREVO, J. R.; CARBALLO, D. & FINLAY, C. M., 1993. Trichiurasis enm Cuba. Revista Cubana de Medicina Tropical, 45: 42 – 45
5- PETITHORY, J. C., 1979. Le controle de qualité en parasitologie. Bulletin de la Société de Pathologie Exotique, 72:386 - 395.
6- KATO, K.% MIURA, M., 1954. Comparative Examinations. (japanese text). Japan Journal of Parasitology, 3:35.
7- ZIERDT, C. H., 1991. Blastocystis hominis – past and future. Clinical Microbiology Reviews, 4:61 – 79.
8- AYALA, S. C. & SANCHEZ, C. E., 1974. Evaluación de los diagnósticos coproparasitológicos de la ciudad de Cali. Acta Médica de Valle, 5:114 – 121.
9- HEALY, G. R., 1986. Inmunologic tools in the diagnosis of amebiasis. Epidemiology in the United State. Reviews of Infectious Diseases, 8:239 – 245.
10- HENRIKSEN, S. A. & POHLENZ, J. F. L., 1981. Staining of crystosporidia by a modified Ziehl – Neelsen technique. Acta Veterinarica Scandinavica, 22: 594 – 596.
11- GRUPO NACIONAL DE LABORATORIOS CLÍNICOS, MINSAP., 1969. Manual de Técnicas para Laboratorios Clñínicos. La Habana. Ciencia y Técnica.
12- GONZALEZ – RUIZ, A. & BENDALL, R. LO., 1995. Size Mtters: The use of ocular micrometer in Diagnostic Parasitology. Parasitology Today, 11: 83 – 85.
13- HAWTHORNE, M.; CHIODINI, P. L.; SNELL, J. J.; MOODY, A. H. & RAMSEY, A., 1992, Parasitology Quality Assessment, United kingdom National Scheme. Journal of Clinical Pathology, 45: 968 – 974.
14- BAUMANN, D. & GOTTSTEIN, B., 1987. Adouble – an – tibody sandwich ELISA for detection of Entamoeba bhistolytica antigen in stool samples of humans. Tropical Medicine and Parasitology, 38:81 – 85.
15- DEL MURO, R.; OLIVA, A.; HERION, P.; CAPIN, R. & ORTIZ-ORTIZ, L., 1987. Diagnosis of Entamoeba histolytica in fgeces by ELISA. Journal of Clinical Laboratory Analysis, 1:322-325.