Parasitosis Intestinal Infantil
Autor: Dra. Ariany Ferrer | Publicado:  14/09/2010 | Microbiologia y Parasitologia , Pediatria y Neonatologia , Gastroenterologia | |
Parasitosis Intestinal Infantil .7

Antropozoonosis: animales infectados. Caso de la Hidatidosis.

Artrópodos: paludismo (transmitida por un piojo).

Vías de Entrada

Digestiva
Mucosas
Cutánea
Respiratoria
Transfusional (caso excepcional)

Acción Patógena

Mecánica: Hidatidosis (quistecompresión de órganos anejos), Ascanidiasis (obstrucción del intestino por un número abundante de parásitos).
Traumática: migración  sarna.
Expoliadora: botriocéfalo  sustrae la vitamina B12
Tóxica: sustancias químicas que son secretadas o vehiculizadas por la sangre, como enzimas proteolíticas, enzimas necrotizantes y venenos.
Citopatógena: destrucción celular (Plasmodium)
Neoplásica: Schistosoma (carcinoma), Fasciola Hepática (tumores biliares)

Clínica

La clínica puede ir desde un portador asintomático o sintomatología leve, hasta unas graves manifestaciones.

Las manifestaciones clínicas dependerán del número de parásitos, del tamaño de los mismos, actividad, toxicidad y respuesta inmunitaria.

Las manifestaciones generales son: anorexia, cefaleas, dolores abdominales... (40,41).

Profilaxis

Control del reservorio y fuentes de infección
Saneamiento del medio ambiente
Higiene personal y de la vivienda
Control higiénico alimentario
Control de artrópodos vectores
Quimioprofilaxis (paludismo / desparasitación)
Diagnóstico Parasitológico

El diagnóstico serológico consiste en la detección de huevos, larvas o adultos de helmintos, así como la observación de trofozoítos (forma vegetativa) o quistes de protozoos.

Identificación

La identificación se lleva a cabo en función de la Morfología y a través de pruebas complementarias como el hemograma (anemia, leucocitosis, eosinofilia) y la radiología (detección de hidatidosis).

Detección Directa en heces

En el caso de la investigación de Trofozoítos deberá hacerse un procesamiento rápido que no deberá superar los 30 minutos después de la recogida de la muestra.

En caso de huevos y larvas no es tan importante el rápido procesamiento. Se utilizará un conservante que se añadirá en proporción 3: 1, es decir 3 partes de conservante por 1 de muestra. Los conservantes más comúnmente utilizados son: Tormalina (formol al 5-10%); PVA (Alcohol Polivinílico) y MIF (Mertiolate Iodo y Fenol.

Generalmente se necesitan 3 muestras recogidas con intervalos de entre 2-3 días, con el fin de que en alguna de ellas aparezcan los trofozoítos, los quistes...

A la muestra se le realiza un Examen Macroscópico en el cual observaremos a los parásitos enteros y la consistencia de la muestra (formes o semiformes; blandas; o líquidas).

También se le realiza un Examen Microscópico en el cual se buscan trofozoítos, quistes y huevos. El procesamiento de la muestra consiste en los siguientes pasos:

Realizar la suspensión de las heces
Depositar una gota en un porta
Añadir un colorante, generalmente lugol, que tiñe las estructuras de un color amarillo-marrón.
Colocar un cubre
Observar al microscopio con el objetivo de bajo aumento.

Se pueden llevar a cabo Técnicas de Concentración en el caso de que el microorganismo sea escaso en la muestra. Existen dos tipos de técnicas de concentración:

Concentración por Flotación: (Huevos, larvas y quistes)

Preparar una solución de Sulfato de Zinc (330 g de Zinc / 670 mL de agua).

Centrifugar a 1500-2000 r.p.m. una suspensión de heces (1-2 mL) durante 1 minuto. Decantar.

Añadir 1-2 mL de Solución de Sulfato

Resuspender: completar el tubo con Sulfato, filtrar con una gasa y centrifugar durante 1 minuto.

Tomar la muestra de la superficie del tubo (los parásitos flotan)

Observar al microscopio con soluciones yodadas (lugol) (42).

Concentración por Sedimentación:

Preparar una suspensión de heces en 10 mL de formol. Dejar reposar durante 30 minutos y filtrar por una gasa a un tubo de fondo cónico.

Completar el tubo con suero salino y centrifugar durante 2 minutos. Eliminamos el sobrenadante.

Resuspender con formol hasta la mitad del tubo y añadir de 1 a 3 mL de éter. Agitar y centrifugar durante 2-3 minutos.

Observar el sedimento utilizando soluciones yodadas (lugol) que proporciona un color amarillo-marrón a las formas buscadas.

Otras de las pruebas que se pueden llevar a cabo son las Tinciones Permanentes como son la tinción Tricrómica y la tinción Hierro-Hematoxilina.

Por último se encuentran las Técnicas Especiales, que son las siguientes:


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